Carotenoid producing bacteria from Antarctica

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Registros

Los datos en este registros biológicos recurso han sido publicados como Archivo Darwin Core(DwC-A), el cual es un formato estándar para compartir datos de biodiversidad como un conjunto de una o más tablas de datos. La tabla de datos del core contiene 30 registros.

Este IPT archiva los datos, sirviendo así como repositorio de datos. Los datos y metadatos están disponibles para descargar en la sección de descargas. La tabla de versiones muestra otras versiones del recurso que se han hecho accesibles al público y permite el seguimiento de los cambios hechos al recurso en el tiempo.

Descargas

Descargue la última versión de los datos como un Archivo Darwin Core (DwC-A) o los metadatos como EML o RTF:

Versiones

La siguiente tabla muestra sólo las versiones publicadas del recurso que son de acceso público.

¿Cómo referenciar?

Los usuarios deben citar este trabajo de la siguiente manera:

Vila E, Hornero-Mendez D, Azziz G, Lareo C, Saravia V (2021): Carotenoid producing bacteria from Antarctica. v1.0. SCAR - Microbial Antarctic Resource System. Dataset/Occurrence. https://ipt.biodiversity.aq/resource?r=carotenoid_bacteria_antarctica&v=1.0

Derechos

Los usuarios deben respetar los siguientes derechos de uso:

El publicador y propietario de los derechos de este trabajo es SCAR - Microbial Antarctic Resource System. This work is licensed under a Creative Commons Attribution (CC-BY) 4.0 License.

Registro GBIF

Este recurso ha sido registrado en GBIF con el siguiente UUID: d5010a6c-152b-4565-b799-cc8eb0e7a77b.  SCAR - Microbial Antarctic Resource System publica este recurso, y está registrado en GBIF como un publicador de datos avalado por Scientific Committee on Antarctic Research.

Palabras Clave

Occurrence

Contactos

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Cobertura Geográfica

Antarctica:King George Island:Fildes Peninsula

Datos del Proyecto

No hay descripción disponible

Personas asociadas al proyecto:

Métodos de Muestreo

A total of 32 liquid and solid samples were collected in 50 mL sterile tubes.

Descripción de la metodología paso a paso:

1. Approximately 100 mg of each sample was suspended in 900 μl of sterile NaCl 0.9% (w/v) solution, serially diluted and plated on adequate media. The isolation medium for samples of organic matter, sediments and ice water was Tryptic Soy Agar (TSA, Sigma Aldrich), and for sea water was TSA complemented with 20 g/L of sea salts (Sigma). Plates were incubated at 10 °C for 7–10 days, and colored colonies were selected for strain isolation by streak-plating technique. Once purity was verified, strains were conserved at −80 °C on glass beads with 20% glycerol in Tryptic Soy Broth (TSB, Oxoid) and sea salts when needed. Strains were characterized by colony and cell morphology, Gram staining and pigment composition.
2. Genomic DNA extraction was performed with a commercial kit according manufacturer’s instructions (Genomic DNA Purification Kit, Thermo Fisher). Amplification of the 16S rRNA gene fragments were done in a Palm-1870 Cycler TM (Corbett Research UK Ltd) as follows: initial denaturation 3 min at 95 °C, then 35 cycles of 45 s at 94 °C, 45 s at 58 °C, 60 s 72 °C, and a final extension step 9 min at 72 °C. Reaction mixtures contained: 2.5 U polymerase (Mango Taq, Bioline), 10 μL of buffer solution, 2.5 μL of 50 mM MgCl2, and 2.5 μL each of forward primer 27 F (5´-AGAGTTTGATC MTGGCTCAG-3´) and reverse primer 1492R (5´-TACGGYTACC TTGTTACGACTT-3´), genomic DNA, and water to 50 μL final volume. The PCR products were analyzed by electrophoresis with 1% agarose gels. DNA sequencing was carried out by Macrogen Inc. (Korea) using universal primers.

Metadatos Adicionales